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| olga:olgaplasmidminipraep [2020-04-10 02:20] – danield | olga:olgaplasmidminipraep [2025-11-09 09:25] (current) – external edit 127.0.0.1 | ||
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| - | ** Baustelle ** | ||
| - | ==== DNA Plasmid Mini-Präp | + | ==== DNA Plasmidpräparation (Minipräp) |
| + | Die Plasmidpräparation (auch Plasmidisolierung) ist eine molekularbiologische Methode zur Isolierung von Plasmid-DNA. Die Bezeichnung " | ||
| - | **Lösungen für die Minilysatpräparation von Plasmid DNA** | + | |
| + | Im OLGA gibt es einfertiges DIY-Minipräp-Kit mit den Lösungen und der Anleitung. Dieses kann/ | ||
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| + | [[https:// | ||
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| + | ==== Lösungen für die Minilysatpräparation von Plasmid-DNA ==== | ||
| **Lösung I:** (400 µL) | **Lösung I:** (400 µL) | ||
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| **Ethanol: 70%** (800 µL) | **Ethanol: 70%** (800 µL) | ||
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| + | **ddH20 (Fresenius Wasser, DNase-freies Wasser)** (20-50 µL] | ||
| -------------------- | -------------------- | ||
| - | Rätsel: | + | ==== Rätsel |
| 3 Tubes mit den Lösungen I, II & III liegen vor einem. Die Beschriftung ist nicht mehr erkennbar. Wie kann man trotzdem feststellen, | 3 Tubes mit den Lösungen I, II & III liegen vor einem. Die Beschriftung ist nicht mehr erkennbar. Wie kann man trotzdem feststellen, | ||
| 1) Riechen: Lösung III riecht nach Essig wegen KAc. | 1) Riechen: Lösung III riecht nach Essig wegen KAc. | ||
| + | |||
| 2) Schütteln: Lösung II bildet Schaum wegen SDS. | 2) Schütteln: Lösung II bildet Schaum wegen SDS. | ||
| - | 3) Lösung 1 bleibt übrig. | + | |
| + | 3) Lösung 1 bleibt | ||
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| + | |||
| + | ==== Durchführung: | ||
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| + | 1. Bakterien werden aus 3 ml ONC geerntet. Dazu 1,5 ml ONC in ein Mikroreaktionsgefäß | ||
| + | (Eppi) füllen und 1 min x 10,000 rpm in der Tischzentrifuge zentrifugieren. Entfernen | ||
| + | des Überstands. Erneut 1,5 ml ONC in Eppi füllen und Zentrifugation wiederholen. | ||
| + | Entfernen des Überstands. | ||
| + | |||
| + | 2. Resuspendieren des Zellpellets in 400 µl Lösung I (4°C). Das Pellet muss vollständig | ||
| + | resuspendiert werden. | ||
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| + | 3. Zugabe von 400 µl Lösung II, vorsichtig mischen (kippen) und 5 min bei Raumtemperatur | ||
| + | inkubieren. Die Lösung im Eppi wird klar und zäh. | ||
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| + | 4. Zugabe von vorgekühlter (Eis!) 400 µl 2,8M Kaliumacetatlösung, | ||
| + | (kippen/ | ||
| + | Das Eppi 15 min auf Eis stellen. | ||
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| + | 5. 10 min bei höchster Umdrehung in der Tischzentrifuge zentrifugieren. | ||
| + | |||
| + | 6. ca. 800 µl Überstand wird ohne Flocken in ein frisches Eppi überführt, | ||
| + | Isopropanol gemischt (kippen/ | ||
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| + | 7. Zentrifugation für 15 Minuten bei 4°C und 10.000 rpm (Eppendorf-Zentrifuge), | ||
| + | zu pelletieren. Der Überstand wird entfernt und das Pellet mit 800 µl eiskaltem 70%- | ||
| + | igen Ethanol gewaschen. Zentrifugation für 15 min siehe oben. Der Überstand wird | ||
| + | vollständig entfernt und das Pellet luftgetrocknet (offener Deckel). | ||
| + | Optional: Trocknen mit offenem Deckel bei 37°C für 10-15 Minuten. | ||
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| + | 8. Das Pellet in 20 µl H20 lösen. | ||
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| + | 9. 3 µl der gelösten Plasmid DNA werden in ein neues Eppi überführt und für nachfolgende | ||
| + | Schnittkontrollen bei -20°C gelagert. Eppi gut beschriften! | ||
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| + | 10. 15µl der restlichen Plasmid-DNA für den Restriktionsansatz verwenden und die | ||
| + | verbleibende Plasmid DNA bei -20°C aufbewahren. Eppis gut beschriften! | ||
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| + | Quellenangabe: | ||
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